Centro de Bachillerato Tecnológico industrial y de servicios No.155
Procesar Cultivos Bacteriológicos.
2do Parcial
Temas:
- Coprocultivo.
- Urocultivo.
- Tinciones necesarias.
Exudado Vaginal.
- DOC Detección Oportuna del Cáncer.
- Exudado Nasofaríngeo.
- Edmoides y Esfenoides.
Mesa No. 5
Velarde Hernández Ingrin Desirée.
Núñez García Jessenia.
Rivera Jiménez Elizabeth.
Medrano Ontiveros Andrea.
Montero Urquiza Cristel Sinai.
Grupo: 4L2M
Tijuana Baja California 7 de Mayo del 2010
INDICE
Coprocultivo
Anatomía de las vías renales
Riñones con estructura anatómica
Uréteres
Vejiga.
Glándulas Endocrinas.
Urocultivo
Exudado Vaginal
Anatomía del aparato Reproductor femenino.
Tipo de Muestra.
DOC (Detección Oportuna del Cáncer)
Niveles de expresión en el diagnostico del cáncer.
Nivel 1: Venigno
Nivel 2: Venigno en Posición de alerta
Nivel 3: Características de cáncer
Nivel 4: Cáncer Declarado
Exudado Nasofaríngeo.
Anatomía de las Vías Respiratorias altas Nasofaríngeas
Edmoides y Esfenoides.
Medios de Cultivo Para este estudio.
COPROCULTIVO
Los coprocultivos se realizan para identificar parásitos, enfermedades entérales y virus en el aparato gastrointestinal. De las muestras que se pueden estudiar, la que tienen más probabilidades de contener el mayor número y variedad de microorganismos es la materia fecal. En el coprocultivo clásico se examinan las heces fecales para detectar y descartar Salmonella, Shigella, Yersinia, E. coli enteropatogena y cultivos de Sthaphylococcus.
MEDIOS DE CULTIVO PARA COPROCULTIVO
EMB
ENDO
MAC CONKEY
S.S
VERDE BRILLANTE
TETRATIONATO CALDO
Un solo coprocultivo negativo no significa que ni haya enfermedad. Se recomienda realizar cuando
menos tres de éstos si el cuadro clínico del paciente siguiere infección bacteriana, no obstante la
Presencia de un cultivo negativo presometerse a la prueba lo contactos personales del paciente para prevenir que la infección se disemine.
Cuando los parásitos se alojan en el aparato digestivo, una proporción de ellos, o las larvas, o los huevos, son eliminados con las heces. Como la cantidad que se elimina en cada defecación puede ser variable, y si hay poco número de parásitos en el intestino, lógicamente también serán escasos en las muestras que se tomen, no siempre que una muestra sale negativa se puede descartar la infección. Por eso, normalmente se toman tres muestras de heces, en tres días distintos. De esta forma se confirma la infección.
Material, Reactivos y Equipo
· Recipiente de boca ancha para recoger las heces, no es necesario que esté estéril, solo es preciso que esté limpio. No contendrá restos de jabones, detergentes, desinfectantes o iones metálicos.
· Recipiente estéril de boca ancha y cierre hermético para enviar la muestra. (Ejemplo: frasco de
Urocultivos). La muestra de heces para colocar en el frasco se recoge con espátula o
abatelenguas.
Muestra de materia fecal en frasco con tapa.
♦ Placas estériles de:
Agar ENDO
Agar EMB
Agar Verde Brillante.
Agar SS.
♦ Tubo de 16 x 150 con 5 ml de caldo tetrationato.
♦ Tubo de 16 x 150 con 5 ml de caldo nutritivo estéril.
♦ Mechero.
♦ Asa.
♦ Incubadora
Al día siguiente:
♦ Placas con coprocultivo.
♦ Equipo de coloración de Gram.
♦ Serie de tubos de cultivo para pruebas bioquímicas: Agar Kligler, SIM médium, Agar citrato de Simmons, Agar manitol, caldo urea, caldo dextrosado, caldo V-P, gelatina, leche descremada, etc.
♦ Mechero.
♦ Asa.
♦ Peseta.
Medios de transporte para heces. Se emplean solo si el envío de la muestra se demora y se
Solicita en laboratorio de Microbiología. Existen sistemas comerciales para bacterias. ( Cary-
Blair o solución de glicerol tamponado)
B.- OBTENCIÓN DE LA MUESTRA
· Solo se procesan materias líquidas o a lo sumo pastosas.
· Si son pastosas se toma una porción del recipiente donde hayan sido emitidas y se transfieren al
Sistema elegido para el envío al laboratorio. Se seleccionan las partes con mucus, pus o sangre.
· En caso de heces líquidas puede utilizarse jeringa para aspirado del material fecal del recipiente
En donde ha sido emitido.
· No se procesarán las muestras de materias sólidas ni contaminadas con orina.
C.- VOLUMEN MINIMO
· Heces pastosas: muestras del tamaño de una nuez son muy adecuadas pues permiten realizar la
Mayoría de los estudios.
· Heces líquidas entre 5 y 10 ml.
D.- TRANSPORTE
· Si la muestra no se envía en forma inmediata se debe refrigerar.
· Si se va a procesar en el plazo de 1 o 2 horas después de su emisión, no necesitan medio de
Transporte.
· En caso contrario se remiten las materias en un sistema de transporte para entero patógeno.
· Mientras tanto mantener refrigerada las muestras, para evitar el sobre crecimiento de la flora
Normal que puede enmascarar o destruir a los entero patógenos. El frío puede afectar la
Viabilidad de Shigella spp.
· Para el estudio de toxinas de Clostridium difficile la muestra se puede mantener hasta 48 horas
Refrigerada a 4 º en la heladera.
Es preferible enviar las muestras para estudio virológico sin medio de cultivo, pues este diluye
Las partículas virales disminuyendo la sensibilidad. Si su envío se retrasa mucho utilizar medio
De transporte y recipientes colocados en hielo.
E.- OBSERVACIONES
Las muestras para coprocultivo, deberán tomarse antes de la administración de antimicrobianos y preferiblemente antes de tomar anti diarreicos. Indicar siempre el juicio diagnóstico de presunción y si el paciente es menor de un año. Solicitar las investigaciones especiales explícitamente (C. difficile, C. perfringens, S. aureus, etc.) En el caso de búsqueda de portadores de Salmonella, se deberá fundamentar adecuadamente el pedido y se necesitan 3 muestras negativas para asegurar que el paciente no es portador.
METODO
TOMENSE PRECAUCIONES DE ASEPSIA AL MANIPULAR LOS ESPECIMENES. AL INOCULAR EN LOS TUBOS ES INDISPENSABLE EL USO DE CUBREBOCAS Y GORRA. TRABAJAR SIEMPRE FRENTE A LA FLAMA DEL MECHERO
AISLAMIENTO.
1) Sembrar una asada de materia fecal sospechosa en el tubo de caldo de tetrationato. Inocular con asa por emulsión.
2) De la misma manera sembrar otra asada de la misma muestra en el tubo de caldo nutritivo.
3) Etiquetar con los datos escolares
4) Llevar a la incubadora a 37ºC durante 24 horas. Colocar los tubos en gradilla de rejilla, de tal manera que se mantengan en posición vertical para evitar que el líquido se derrame.
Hasta tres muestras es el número óptimo de coprocultivos para obtener un buen resultado en el aislamiento del agente infeccioso, especialmente cuando los síntomas no son claros y definitivos.
Las tinciones de Gram no son útiles pero la muestra al fresco con tinción de Loeffler puede ayudar a visualizar la presencia de leucocitos fecales, que en grandes números indican procesos inflamatorios. La morfología de los leucocitos predominantes es indicio del agente infeccioso.
ANATOMIA DE LAS VIAS RENALES
Fisiología del riñón y vías urinarias
La función principal de los riñones consiste en filtrar los productos metabólicos de desecho y el exceso de sodio y de agua de la sangre, así como facilitar su eliminación del organismo. También ayudan a regular la presión arterial y la producción de glóbulos rojos.
De cada riñón parte un tubo llamado uréter que conduce la orina desde la zona de recolección central de los riñones (pelvis renal) hacia la vejiga. Desde allí, la orina sale hacia el exterior del cuerpo a través de la uretra.
Cada riñón contiene alrededor de un millón de unidades encargadas de la filtración, que reciben el nombre de nefronas. Una nefrona está constituida por una estructura redonda y hueca llamada cápsula de Bowman, que contiene una red de pequeños vasos sanguíneos (el glomérulo). Estas dos estructuras conforman lo que se denomina un corpúsculo renal.
La sangre entra en el glomérulo a través de la arteriola aferente y sale a través de la arteriola eferente. Mientras está en el glomérulo, la fracción líquida de la sangre se filtra a través de pequeños poros situados en las paredes de los vasos sanguíneos del glomérulo, pasando a la cápsula de Bowman.
Después pasa al túbulo proximal. Las células sanguíneas y las moléculas más grandes, como las proteínas, no se filtran. Desde el túbulo proximal, el líquido pasa al asa de Henle, que penetra profundamente en el riñón. De ahí pasa al túbulo distal. Después se unen varios túbulos distales para para formar el túbulo colector. Los túbulos colectores se van uniendo para formar unidades cada vez más grandes. A medida que el líquido filtrado glomerular fluye por los túbulos, se reabsorbe hasta un 99% de agua y cantidades variables de otras sustancias como sodio y glucosa. El agua restante y las sustancias disueltas en ella que no han sido reabsorbidas constituyen la orina.
El riñón también utiliza energía para transportar selectivamente unas cuantas moléculas de gran tamaño (incluyendo fármacos como la penicilina, pero no las proteínas) y llevarlas hacia el interior del túbulo. Estas moléculas se excretan en la orina aunque sean demasiado grandes para pasar a través de los poros del filtro glomerular. Mediante las hormonas que influyen en la función renal, el organismo controla la concentración de orina según sus necesidades de agua. La orina formada en los riñones fluye por los uréteres hacia el interior de la vejiga, pero no lo hace pasivamente. Los uréteres son tubos musculares que conducen cada pequeña cantidad de orina mediante ondas de contracción. En la vejiga, cada uréter pasa a través de un esfínter, una estructura muscular de forma circular que se abre para dejar paso a la orina y luego se va estrechando hasta cerrarse herméticamente.
La orina se va acumulando en la vejiga a medida que llega con regularidad por cada uréter. La vejiga, que se puede dilatar, aumenta gradualmente su tamaño para adaptarse al incremento del volumen de orina y cuando finalmente se llena, envía señales nerviosas al cerebro que transmiten la necesidad de orinar.
Durante la micción, otro esfínter, ubicado entre la vejiga y la uretra (a la salida de la vejiga), se abre, dejando fluir la orina. Simultáneamente, la pared de la vejiga se contrae, creando una presión que fuerza la orina a salir por la uretra. La contracción de los músculos de la pared abdominal añade una presión adicional. Los esfínteres, a través de los cuales los uréteres entran en la vejiga, permanecen herméticamente cerrados para impedir que la orina refluya hacia los uréteres.
FEMENINO AMBOS SEMOS MASCULINO.
ESTRUCTURA ANATOMICA DE LOS RIÑONES, URETEROS
VEJIGA, URETRA Y GLANDULAS ENDOCRINAS.
BIBLIOGRAFIA
http://www.scribd.com/doc/8550544/coprocultivo
http://www.carloshaya.net/biblioteca/contenidos/docs/nefrologia/predialisis/pacodiez.PDF
http://www.estrucplan.com.ar/articulos/disruptores1/image003.jpg
UROCULTIVO
UTILIDAD CLINICA
TECNICAS PARA OBTENER UNA MUESTRA LIMPIA DE ORIDA O DEL CHORRO MEDIO:
Toma de muestra en mujeres:
La muestra debe ser tomada preferentemente en el Laboratorio. Si ello no es posible, hacerlo en su casa con las mismas instrucciones y teniendo la mayor limpieza posible.
-Tape muy bien el frasco y rotúlelo con su nombre, tráigalo al Laboratorio lo más pronto posible, en un recipiente con hielo, cuidando de que no se bote el contenido.
Toma de muestra en hombres:
La muestra debe ser tomada preferentemente en el Laboratorio. Si ello no es posible, seguir las mismas instrucciones en su casa. Debe hacerse una antisepsia previa de la zona genital, por lo tanto debe tener a la mano lo siguiente:
a) jabón desinfectante
b) agua hervida o agua estéril a
temperatura ambiente
c) gasa estéril o un paño acabado de
lavar
d) el recipiente para tomar la muestra.
Lavarse con jabón desinfectante primero las manos y luego la cabeza del pene empezando por la abertura uretral y continúe en dirección a usted, como muestra la ilustración, previa retracción del prepucio, si no está circuncidado.
Luego enjuagar bien con agua estéril o previamente hervida (a temperatura ambiente) y secar con gasa estéril.
Destape el frasco recolector sólo en el momento de la micción y sin tocar con los dedos su parte interna, coloque la tapa con el lado plano hacia abajo. Comience a orinar en la poceta y recoja en el frasco sólo la muestra del chorro del medio, es decir, no debe recoger ni la primera ni la última parte del chorro de orina.
Tapar bien el frasco, rotularlo con su nombre y traerlo al laboratorio lo más pronto posible, en un recipiente con hielo y cuidando de que no se bote.
Método de conteo en placa o recuento de colonias. Introducido por Kaas para evitar los riesgos del cateterismo vesical y diferenciar bacteriuria verdadera de contaminación, se realiza de la siguiente manera:
Se homogeneiza la muestra mediante agitación.
Se diluye la muestra al 1:100, colocando 0.1 ml. de orina en 9.9 ml. de caldo de tripticasa o de suero fisiológico, estériles.
Se preparan diluciones al 1:1000 y 1:10 000, a partir de la dilución al 1:100.
Se deposita 1 ml. de cada dilución en placas de Petri esterilizadas, sobre las cuales se vacía un tubo de agar-tripticasa o medio CLED, fundidos y enfriados a 45°. Mediante rotación suave, se favorece la distribución homogénea de la siembra.
METODO DE KASS
Se incuban todas las siembras a 37° durante 24 a 48 horas.
Para calcular el número de colonias se eligen placas que contengan entre 30 y 300 colonias. Contadas éstas, basta multiplicar su número por la dilución respectiva para obtener la cuenta total.
· Método del asa calibrada. Esta estimación cuantitativa consiste en sembrar una placa con medio de agar-sangre o agar con CLED en una muestra de orina, sin centrifugar, empleando asa de platino calibrada (4 mm. de diámetro). Después de incubar las siembras a 37° durante 24 a 48 horas, se cuenta el número de colonias desarrolladas y el resultado se multiplica por 100, ya que la asada de platino contiene 0.01 ml. de orina.
Los resultados del estudio cuantitativo se informan de la siguiente manera:
No hubo desarrollo microbiano.
Menos de 10 000 colonias por ml.
Entre 10 000 y 100 000 colonias por ml.
Más de 100 000 colonias por ml.
Cuando se obtienen dos recuentos sucesivos con más de 100 000 colonias por ml., la probabilidad de infección es de 80%, cifra que se eleva a 95% si el mismo resultado se logra en tres recuentos sucesivos.
Por lo general, las muestras contaminadas tienden a mostrar cuentas inferiores a 10 000 colonias/ml. Cuando el recuento revela valores intermedios, entre 10 0000 y 100 000 colonias /ml, el examen debe repetirse. Conviene advertir que pueden pasar inadvertidas infecciones urinarias verdaderas, si no se toman en cuenta cuentas inferiores a 100 000 colonias por ml, ya que existen diversos factores que pueden explicar recuentos bajos en infecciones urinarias verdaderas, diuresis acentuada, obstrucción uretral, infecciones crónicas e infecciones por cocos grampositivos.
EXAMEN CUALITATIVO
El estudio cualitativo, que conduce a la identificación del agente, se realiza mediante la siembra de la muestra homogeneizada, en placas con agar-sangre, agar-CLED, agar de Levine o MacConkey. Es recomendable el medio CLED, porque favorece el desarrollo de bacterias patógenas urinarias y permite la identificación de los microorganismos contaminados. Su contenido en cisteína y lactosa y su deficiencia en electrolitos facilitan, por una parte, el reconocimiento de colonias de bacterias y, por otra, inhiben el carácter invasor de las colonias de Proteus. Así se facilita la identificación de estafilococos, bacilos difteromorfos, lactobacilos y otros agentes que pueden contaminar la orina.
La identificación final de los agentes se hace mediante el estudio de sus propiedades bioquímicas y características serológicas. Esto permite establecer relaciones de identidad entre microorganismos aislados en cultivos sucesivos o de control, y definir el estado de revivida o de reinfección. De esto deriva el valor que tiene el conocimiento del biotipo, del serotipo (particularmente en E. coli), del piocinotipo (en especial cuando es de Ps. aeruginosa) y del antibiótico. Éste último se obtiene al comparar el antibiograma de cepas aisladas de muestras obtenidas de diferentes oportunidades en un mismo paciente Si existe correspondencia, se concluye que se trata de una misma cepa.
METODOS RAPIDOS DE DIAGNOSTICO
- Existen varios procedimientos prácticos y económicos para el diagnóstico rápido de infecciones urinarias o de bacteriurias significativas. Son útiles para investigar grandes grupos de personas. Estos métodos pueden ser microscópicos, químicos o de microcultivo.
Placas de agar McConkey y de agar CLED, donde ha crecido un Escherichia Coli en cultivo puro, con un recuento superior a 100.000 UFC/ml. (cultivo sembrado con asa calibrada de 1/1000).
TINCION PARA UROCULTIVO
- La coloración de un frotis de orina no centrifugada mediante el método de Gram constituye un índice práctico para diferenciar entre infección y contaminación urinarias. En efecto, la observación de un bacilo gramnegativo por campo microscópico puede realizarse cuando la muestra contiene más de 100 000 bacterias por ml. Sin embargo, la dificultad de encontrar bacterias en frotis de orina por este método, provoca resultados falsos negativos. Menos confiable aun es el hallazgo de 20 o más bacterias gramnegativas por campo microscópico de sedimento urinario, aunque dicho número permita sospechar recuentos superiores a 100 000 microorganismos por ml.
- Los procedimientos químicos están basados en propiedades enzimáticas de las bacterias, que se pueden poner de manifiesto en la orina. Entre las pruebas se pueden mencionar: catalasa, reducción de nitratos, reducción de trifeniltetrazolio e hipoglucosuria. Estos métodos, aunque rápidos y económicos, tienen el inconveniente de ser indirectos, basarse en propiedades metabólicas de las bacterias y no en su desarrollo y observación, y producir muchos falsos negativos.
EXUDADO VAGINAL
El exudado vaginal es remitido al laboratorio para el diagnóstico de vaginitis, una inflamación de la vagina, y vaginosis, una alteración del equilibrio de la flora vaginal sin inflamación.
La infección vaginal es frecuentemente la causa de molestias en la mujer adulta y los síntomas de vaginitis son los síntomas de índole ginecológico que con más frecuencia ven ginecólogos y médicos de atención primaria.
La vaginosis bacteriana es la causa más frecuente de consulta de la mujer por síntomas vaginales (40 - 50 %), seguida por candidiasis (20 - 25 %), y trichomoniasis (15 - 20 %).
La causa de vaginitis/vaginosis no puede determinarse sólo sobre la base de los síntomas clínicos o el examen físico. Para realizar el diagnóstico correcto se requiere la evaluación microscópica del exudado vaginal. Los métodos de cultivo son menos útiles para el diagnóstico de algunas entidades vaginales.
La evaluación microscópica requiere evaluar tres características:
- aspecto de las células epiteliales
- aspecto del germen dominante y/o morfotipos presente la presencia o ausencia de leucocitos.
TOMA DE MUESTRA PARA EL DIAGNÓSTICO DE LA INFECCIÓN VAGINAL.
Mycoplasma hominis. Importante es que no hay células inflamatorias.
– pH 4,5 o superior pH 4,5 o superior.
– más del 20 % de las células epiteliales son células "clue".
– Descarga grisácea homogénea.
- cumple los criterios de Nugent y Thomason; más de 7 morfotipos bacterianos distinto
Candida albicans es responsable para el 80 % al 92 % de los casos.
OTRAS INFECCIONES MENOS FRECUENTES
- Vaginitis por Streptococcus pyogenes, relativamente frecuente en niñas de 3 – 5 años.
ANATOMIA DEL APARATO REPRODUCTOR FEMENINO
El aparato genital femenino es un tubo que presenta la particularidad anatómica de poner en comunicación una cavidad serosa con el exterior. Se lo divide en órganos genitales internos y externos.
La evaluación microscópica requiere evaluar tres características:
- aspecto de las células epiteliales
- aspecto del germen dominante y/o morfotipos presente
- la presencia o ausencia de leucocitos.
TOMA DE MUESTRA PARA EL DIAGNÓSTICO DE LA INFECCIÓN VAGINAL.
DOC (DETECCION OPORTUNA DEL CANCER)
Citología en base líquida o citología de monocapa
"El Cáncer cervicouterino se puede
prevenir y curar a un costo y riesgo bajos
cuando el tamizaje para facilitar la
detección oportuna de lesiones precursoras,
está disponible junto con el diagnóstico
apropiado, el tratamiento y seguimento."
4 NIVELES DE EXPRESION EN EL DIAGNOSTICO DEL CANCER
Etapa 0 Etapa 1, Etapa 2, Etapa 3 Etapa 4
http://quimicosclinicosxalapa04.spaces.live.com/blog/cns!204AC1C68E772D5!1160.entry?sa=39670056
http://www.aefa.es/index.php?option=com_docman&task=doc_download&gid=145&mode=view
http://mx.answers.yahoo.com/question/index?qid=20090613150901AAIIfgK
http://www.anatomia.tripod.com/gineco.htm
ANATOMIA DE LAS VIAS RESPIRATORIAS ALTAS NAZOFARINGEAS HACIENDO MENCION DE LOS HUESOS PROPIOS DE LA CARA (EDMOIDES Y ESFENOIDES)
ÓRGANOS
Los órganos respiratorios sirven para el transporte del oxígeno a la sangre y por medio de ella a los tejidos, así como para la expulsión al aire atmosférico del ácido carbónico.
En los mamíferos, los órganos respiratorios se desarrollan de la pared ventral del intestino anterior, con el que guardan relación durante toda la vida. Eso explica el cruzamiento de las vías respiratorias y digestivas a la altura de la faringe, mantenido en el hombre.
1. FOSAS NASALES
Es la parte inicial del aparato respiratorio, en ella el aire inspirado antes de ponerse en contacto con el delicado tejido de los pulmones debe ser purificado de partículas de polvo, calentado y humidificado.
Las paredes de la cavidad junto con el septo y las 3 conchas, están tapizadas por la mucosa. La mucosa de la nariz contiene una serie de dispositivos para la elaboración del aire inspirado.
PRIMERO: Está cubierta de un epitelio vibrátil cuyos cilios constituyen un verdadero tapiz en el que se sedimenta el polvo y gracias a la vibración de los cilios en dirección a las coanas, el polvo sedimentados es expulsado al exterior.
SEGUNDO: La membrana contiene glándulas mucosas, cuya secreción envuelve las partículas de polvo facilitando su expulsión y humedecimiento del aire.
TERCERO: El tejido submucoso es muy rico en capilares venosos, los cuales en la concha inferior y en el borde inferior de la concha media constituyen plexos muy densos, cuya misión es el calentamiento y la regulación de la columna de aire que pasa a través de la nariz. Estos
dispositivos descritos están destinados a la elaboración mecánica del aire, por lo que se denomina REGIÓN RESPIRATORIA.
En la parte superior de la cavidad nasal a nivel de la concha superior, existe un dispositivo para el control del aire inspirado, formando el órgano del olfato y por eso esta parte interna de la nariz se denomina REGIÓN OLFATORIA; en ella se encuentran las terminaciones nerviosas periféricas del nervio olfatorio, las células olfatorias que constituyen el receptor del analizador olfatorio.
2. FARINGE
Es la parte del tubo digestivo y de las vías respiratorias que forma el eslabón entre las cavidades nasal y bucal por un lado, y el esófago y la laringe por otro. Se extiende desde la base del cráneo hasta el nivel de las VI - VII vértebras cervicales.
Esta dividida en 3 partes:
- Porción nasal o rinofaringe.
- Porción oral u orofaringe.
- Porción laríngea o laringofaringe.
PORCION NASAL: Desde el punto de vista funcional, es estrictamente respiratorio; a diferencia de las otras porciones sus paredes no se deprimen, ya que son inmóviles. La pared anterior está ocupada por las coanas. Está tapizada por una membrana mucosa rica en estructuras linfáticas que sirve de mecanismo de defensa contra la infección.
PORCION ORAL: Es la parte media de la faringe. Tiene función mixta, ya que en ella se cruzan las vías respiratorias y digestivas. Cobra importancia desde el punto de vista respiratorio ya que puede ser ocluida por la lengua o secreciones, provocando asfixia.
PORCION LARINGEA: Segmento inferior de la faringe, situado por detrás de la laringe, extendiéndose desde la entrada a esta última hasta la entrada al esófago. Excepto durante la deglución, las paredes anterior y posterior de este segmento, están aplicadas una a la otra, separadandose únicamente para el paso de los alimentos.
3. LARINGE:
Es un órgano impar, situado en la región del cuello a nivel de las IV, V y VI vértebras cervicales. Por detrás de la laringe se encuentra la faringe, con la que se comunica directamente a través del orificio de entrada en la laringe, el ADITO DE LA LARINGE, por debajo continúa con la tráquea.
Esta constituido por una armazón de cartílagos articulados entre sí y unidos por músculos y membranas. Los principales cartílagos son 5:
- Tiroide.
- Epiglotis.
- Aritenoideos (2).
A la entrada de la laringe se encuentra un espacio limitado que recibe el nombre de GLOTIS. Cerrando la glotis se encuentra un cartílago en forma de lengüeta que recibe el nombre de EPIGLOTIS y que evita el paso de líquidos y alimentos al aparato respiratorio durante la deglución y el vómito, si permanece abierto se produce la bronco aspiración.
La laringe en su interior presenta un estrechamiento, producido por 4 repliegues, dos a cada lado, denominándose cuerdas vocales superiores e inferiores, encargadas de la fonación.
4.TRAQUEA:
Es la prolongación de la laringe que se inicia a nivel del borde inferior de la VI vértebra cervical y termina a nivel del borde superior de la V vértebra torácica, donde se bifurca, en el mediastino, en los dos bronquios.
Aproximadamente la mitad de la tráquea se encuentra en el cuello mientras que el resto es intratorácico. Consta de 16 a 20 anillos cartilaginosos incompletos (cartílagos traqueales) unidos entre sí por un ligamento fibroso denominándose ligamentos anulares. La pared membranosa posterior de la tráquea es aplanada y contiene fascículos de tejido muscular liso de dirección transversal y longitudinal que aseguran los movimientos activos de la tráquea durante la respiración, tos, etc.
La mucosa está tapizada por un epitelio vibrátil o cilios (excepto en los pliegues vocales y región de la cara posterior de la epiglotis) que se encuentra en movimiento constante para hacer ascender o expulsar las secreciones o cuerpos extraños que puedan penetrar en las vías aéreas.
El movimiento ciliar es capaz de movilizar grandes cantidades de material pero no lo puede realizar sin una cubierta de mucus. Si la secreción de mucus es insuficiente por el uso de atropina o el paciente respira gases secos, el movimiento ciliar se detiene. Un Ph < 6.4 o > de 8.0 lo suprime.
5.BRONQUIOS Y SUS RAMIFICACIONES:
A nivel de la IV vértebra torácica la tráquea se divide en los bronquios principales, derecho e izquierdo. El lugar de la división de la tráquea en dos bronquios recibe el nombre de bifurcación traqueal. La parte interna del lugar de la bifurcación presenta un saliente semilunar penetrante en la tráquea, la CARINA TRAQUEAL.
Los bronquios se dirigen asimétricamente hacia los lados, el bronquio derecho es más corto (3 cm), pero más ancho y se aleja de la tráquea casi en ángulo obtuso, el bronquio izquierdo es más largo (4 - 5 cm), más estrecho y más horizontal. Lo que explica que los cuerpos extraños, tubos endotraqueales y sondas de aspiración tiendan a ubicarse más frecuentemente en el bronquio principal derecho. En los niños menores de 3 años el ángulo que forman los dos bronquios principales en la Carina, es igual en ambos lados.
El número de cartílagos del bronquio derecho es de 6 a 8 y el bronquio izquierdo de 9 a 12. Los cartílagos se unen entre sí mediante los ligamentos anulares traqueales.
Al llegar los bronquios a los pulmones, penetran en ellos por el HILIO PULMONAR, acompañado de vasos sanguíneos, linfáticos y nervios, iniciando su ramificación. El bronquio derecho se divide en 3 ramas ( superior, media e inferior), mientras que el izquierdo se divide en 2 ramas (superior e inferior).
En el interior de los pulmones cada una de estas ramas se divide en bronquios de menos calibre, dando lugar a los llamados BRONQUIOLOS, que se subdividen progresivamente en BRONQUIOLOS de 1ero, 2do y 3er orden, finalizando en el bronquiolo terminal, bronquiolo respiratorio, conducto alveolar, sacos alveolares y atrios.
A medida de la ramificación de los bronquios va cambiando la estructura de sus paredes. Las primeras 11 generaciones tienen cartílagos como soporte principal de su pared, mientras que las generaciones siguientes carecen de el.
6.PULMONES:
El pulmón es un órgano par, rodeado por la pleura.
El espacio que queda entre ambos recesos pleurales, se denomina MEDIASTINO, ocupado por órganos importantes como el corazón, el timo y los grandes vasos.
Por otra parte el DIAFRAGMA es un músculo que separa a los pulmones de los órganos abdominales.
Cada pulmón tiene forma de un semicono irregular con una base dirigida hacia abajo y un ápice o vértice redondeado que por delante rebasa en 3 - 4 cm el nivel de la I costilla o en 2 - 3 cm el nivel de la clavícula, alcanzando por detrás el nivel de la VII vértebra cervical. En el ápice de los pulmones se observa un pequeño surco (surco subclavicular), como resultado de la presión de la arteria subclavia que pasa por ese lugar.
En el pulmón se distinguen 3 caras:
- Cara diafragmática.
- Cara costal.
- Cara media (se encuentra el hilio del pulmón a través del cual penetra los bronquios y la arteria pulmonar, así como los nervios y salen las dos venas pulmonares y los vasos linfáticos, constituyendo en su conjunto la raíz del pulmón).
El pulmón derecho es más ancho que el izquierdo, pero un poco más corto y el pulmón izquierdo, en la porción inferior del borde anterior, presenta la incisura cardiaca.
Los pulmones se componen de lóbulos; el derecho tiene 3 (superior, medio e inferior) y el izquierdo tiene 2 (superior e inferior).Cada lóbulo pulmonar recibe una de las ramas bronquiales que se dividen en segmentos, los que a su vez están constituidos por infinidad de LOBULILLOS PULMONARES. A cada lobulillo pulmonar va a para un bronquiolo, que se divide en varias ramas y después de múltiples ramificaciones, termina en cavidades llamadas ALVEOLOS PULMONARES.
Los alvéolos constituyen la unidad terminal de la vía aérea y su función fundamental es el intercambio gaseoso. Tiene forma redondeada y su diámetro varía en la profundidad de la respiración.
Los alvéolos se comunican entre sí por intermedio de aberturas de 10 a 15 micras de diámetro en la pared alveolar que recibe el nombre de POROS DE KOHN y que tienen como función permitir una buena distribución de los gases entre los alvéolos, así como prevenir su colapso por oclusión de la vía aérea pulmonar.
Existen otras comunicaciones tubulares entre los bronquiolos distales y los alvéolos vecinos a el, que son los CANALES DE LAMBERT. Su papel en la ventilación colateral es importante tanto en la salud como en la enfermedad.
Existen diferentes características anatómicas que deben ser recordadas:
- El vértice pulmonar derecho se encuentra más alto que el izquierdo, al encontrarse el hígado debajo del pulmón derecho.
- En el lado derecho la arteria subclavia se encuentra por delante del vértice, mientras que en el izquierdo su porción es más medial.
- El pulmón derecho es más corto y ancho que el izquierdo.
- El parénquima pulmonar carece de inervación sensitiva, por lo que muchos procesos pulmonares resultan silentes.
PLEURA:
Representa una túnica serosa, brillante y lisa. Como toda serosa, posee 2 membranas, una que se adhiere íntimamente al pulmón (pleura visceral) y otra que reviste el interior de la cavidad torácica (pleura parietal). Entre ambas se forma una fisura (la cavidad pleural), ocupada por una pequeña cantidad de líquido pleural que actúa como lubricante y permite el deslizamiento de ambas hojas pleurales.
La pleura visceral carece de inervación sensitiva mientras que la parietal si posee inervación sensitiva, esto hace que los procesos que afectan a la pleura parietal sean extremadamente dolorosos.
La pleura parietal se divide en 3: pleura costal, pleura diafragmática y mediastínica.
ETMOIDES Y ESFENOIDES
El etmoides es un pequeño hueso que forma parte de la pared externa de las fosas nasales, y el esfenoides, en la parte anterior y mediante la base del cráneo, aloja la glándula
hipófisis.
Etmoides
Es el hueso impar medio más anterior de la base del cráneo.
Visto de frente presenta forma de cruz latina de cuyos brazos horizontales (lámina horizontal) cuelgan masas laterales cúbicas. La porción vertical superior de la cruz (crista galli) forma una eminencia anteroposterior en la fosa craneal anterior y se articula con el hueso frontal. El pie de la cruz (lámina perpendicular o sagital) forma un tabique medio que divide en dos (izquierda y derecha) las fosas nasales posteriores; su borde posterior articula con el cuerpo del esfenoides, su borde anterior con los huesos propios nasales, y su borde inferior con el vómer y el tabique nasal cartilaginoso.
La parte central de la lámina horizontal (lámina cribiforme) forma parte, en su cara superior, de la fosa craneal anterior (lecho de los bulbos olfatorios), y en su cara inferior, del techo de las fosas nasales; presenta múltiples orificios para el paso de las fibras nerviosas olfatorias.
La cara externa de las masas laterales (lámina papirácea) forma parte de la pared interna de la órbita ocular, y la cara interna forma la pared externa de las fosas nasales. De esta cara interna nacen los cornetes superior y medio, laminillas óseas retorcidas que sobresalen en las fosas nasales. Con éstas comunica el interior de las masas laterales, formado por múltiples celdillas (senos etmoidales) recubiertas de mucosa y llenas de aire.
Esfenoides
Hueso impar central de la base del cráneo, simétrico, situado detrás del etmoides y el frontal, delante del occipital y por dentro de los temporales.
De geometría compleja, se distinguen en él: un cuerpo, dos alas mayores, dos alas menores y dos apófisis pterigoides.
La cara superior del cuerpo presenta en su centro la silla turca para la hipófisis y hacia atrás el clivus que se une al occipital. Las caras laterales del cuerpo presentan un surco para la arteria carótida. El interior del cuerpo está hueco, formando los senos esfenoidales, comunicados por la cara anterior del cuerpo esfenoidal con las fosas nasales. La cara inferior del cuerpo forma parte de la bóveda nasal y articula con el etmoides y el vómer.
Las alas menores presentan en su base el conducto para los nervios y arterias ópticos. Su cara superior forma la fosa craneal anterior, y su cara inferior la órbita. Entre ellas y las alas mayores salen los nervios motores oculares.
La cara superior de las alas mayores forma la fosa craneal media, que presenta orificios para los nervios maxilar y mandibular y la arteria meníngea media. La cara inferior forma parte de las fosas temporal, orbitaria y esfenomaxilar. Articulan con frontal, temporales y occipital.
Las apófisis pterigoides descienden desde el cuerpo, formando las fosas pterigoidea, escafoidea, nasal y cigomática.
EXUDADO NASOFARINGEO
Toma: Se pide al paciente que se siente y coloque su cabeza hacia atrás. Se introduce un hisopo de alginato de calcio, dacrón o nylon (nunca de algodón en caso de sospechar Bordetella) por las fosas nasales hasta la nasofaringe, sin tocar los cornetes y tratando de producir un acceso de tos. El hisopo se mantiene in situ de 10-15 segundos durante el acceso de tos, después de lo cual se retira rápidamente.
Envío: Si la muestra no se va a procesar de inmediato, el hisopo se mantiene en un medio de transporte y se envía de inmediato con refrigerante:
- Agentes virales: El hisopo con la muestra se introduce en un tubo de tapón de rosca con 0.5 mL de solución salina isotónica estéril. Se rompe la varilla de madera a la altura del tapón y se tapa herméticamente.
- Agentes bacterianos: El hisopo con la muestra se introduce en un tubo de tapón de rosca con medio de Amies o de Stuart. Se rompe la varilla de madera a la altura del tapón y se tapa herméticamente.
Esta muestra debe tomarse durante las primeras 72 horas de iniciado el cuadro clínico y mantenerse a 4 ºC
INFECCIONES RESPIRATORIAS POSIBLES DE DIAGNOSTICAR.
- INFLUENZA
- OTROS VIRUS RESPIRATORIOS
- CITOMEGALOVIRUS
- EPSTEIN-BARR
- NEUMOCOCOS
- ESTREPTOCOCOS BETA HEMOLITICOS
- HAEMOPHILUS INFLUENZAE
- NEISSERIA MENINGITIDIS
- LEGIONELOSIS
- TUBERCULOSIS
- NOCARDIOSIS
- HISTOPLASMOSIS
- COCCIDIODOMICOSIS
- CRIPTOCOCOSIS
BIBLIOGRAFIA
http://www.eccpn.aibarra.org/temario/seccion5/capitulo67/capitulo67.htm
http://html.rincondelvago.com/aparato-respiratorio_1.html